Micotoxinas y Fosfatasa Alcalina de Camarón Cultivado

Authors

  • Josafat-Marina Ezquerra-Brauer Universidad de Sonora
  • Jesús-Alberto Pérez-Acosta Universidad de Sonora
  • Armando Burgos-Hernández Universidad de Sonora
  • Enrique Márquez-Ríos Universidad de Sonora
  • Aldo-Alejandro Arvizu-Flores Universidad de Sonora

Keywords:

Micotoxinas, mezcla, fosfatasa alcalina, camarón cultivado

Abstract

En varios insumos empleados para la elaboración de dietas para camarones, se han detectado la presencia de hongos productores de toxinas, entre los que destacan Aspergillus, Fusarium y Penicillum. Dependiendo de la concentración de la micotoxina es el daño observado, sin embargo, el principal problema es que, difícilmente en la naturaleza se encuentra una sola toxina, por lo que el riesgo se potencializa, por un efecto sinergista cuando hay más de dos toxinas presentes. En Litopenaeus vannamei se detectó que la aflatoxina afecta la actividad de varias enzimas, entre ellas la fosfatasa alcalina (FAL). La FAL es una enzima hidrolasa relacionada con sistemas de eliminación de toxinas. En la FAL semipurificada del hepatopáncreas de L. vannamei, se observó que tanto la AFB1 como la FB1, solas o en mezcla, tuvieron la capacidad de potenciar la actividad de la enzima. El mayor efecto se obtuvo al tener mayor concentración de AFB1 en la mezcla. La temperatura también influyó sobre la actividad de la FAL, hasta los 35°C y AFB1 la actividad aumenta, mientras que a 45°C aún en presencia de micotoxinas dicha actividad disminuye drásticamente. La concentración media efectiva (EC50) establecida para AFB1 fue de 205 ng/g y para FB1 1.8 g/g.

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References

Bintvihok A., Ponpornpisit, A., Tangtrongpiros, J., Panichkriangkrai, W., Rattanapanee, R., Doi K. & Kamagai S. (2003). Aflatoxin contamination in shrimp feed and effects of aflatoxin addition to feed on shrimp production. Journal of Food Protection 66, 882–885.

Boonyaratpalin M., Supamattaya K., Verakunpiriya V. & Supraser D. 2001. Effects of aflatoxins B1 on growth performance, blood components, immune function and histopathological changes in black tiger shrimps (Penaeus monodon Fabricius). Aquaculture Research 32, 388-398.

Burgos-Hernández A., Farias S. I., Torres-Arreola W., & Ezquerra-Brauer J. M. (2005) In vitro studies of the effects of aflatoxin B1 and fumonisin B1 on trypsin-like and collagenase-like activity from the hepatopancreas of white shrimp (Litopenaeus vannamei). Aquaculture 250, 399–410.

CAST (1989) Mycotoxins: Economic and Health Risks In: Council for Agriculture Science and Technology Task Force. Report 116. Ames, IA.

Chaung N.N & Shih SL (1990) Purification and some properties of alkaline phosphatase from the hepatopancreas of the shrimp Penaeus japonicus (Crustacea: Decapoda). Journal of Experimental Zoology 256, 1-7.

Cohen P. (1989) The structure and regulation of protein phospatases. Ann. Rev. Biochemistry 58, 453-508.

Divakaran S. &Tacon A. (2000) Studies on the toxicity of shrimp (Penaeus vannamei) fed diets dosed with aflatoxin B1 to humans. Journal of Aquatic Food Product Technology 9, 11 5-119.

García-Morales MH, Pérez-Velásquez M, Burgos-Hernández A, Cortez-Rocha MO, Ezquerra-Brauer JM. (2008) Effects of fumonisin B1 on growth, survival, and ice storage life of white shrimp (Litopenaeus vannamei). 59th Pacific Fisheries Technologists Annual Meeting pp.49. San Francisco, Cal. USA.

Hose J.E., Lightner D.V., Redman R.M. & Danald D.A. (1984) Observations on the pathogenesis of the imperfect fungus, Fusarium solani, in the California brown shrimp, Penaeus californiensis. Journal of Invertebrate Pathology 44, 292-303.

Keller NP, Turner G, & Bennett JW (2005). Fungal secondary metabolism–from biochemistry to genomics. Nature Reviews Microbiology 3, 937–947.

Olsen R.L., Ѳverbѳ K. & Myrnes B. (1991) Alkaline phophatase from the hepatopancreas of shrimp (Pandalus borealis): A dimeric enzyme with catalytically active subunits. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Comparative Biochemistry 99, 755-761.

Ostrowski-Meissner H., LeaMaster B., Duerr E. & Walsh W. (1995) Sensitivity of the pacific white shrimp, Penaeus vannamei, to aflatoxin B1. Aquaculture 131,155-164.

Spring P. & Fegan D.F. (2005) Mycotoxins- a rising threat to aquaculture. In: Nutritional Biotechnology in the Feed and Food Industries. Proceedings of Alltech’s 21st Annual Symposium, Lexington, Kentucky, USA.

Supamattaya K., Sukrakanchana N., Boonyaratpalin M., Schatzmayr D.& Chittiwan V. (2005) Effects of ochratoxin A and deoxynivalenol on growth performance and immuno-physiological parameters in black tiger shrimp (Penaeus monodon). Songklanakarin Journal of Science and Technology 27(Suppl. 1), 91-99

WHO (1990) Environmental Health Criteria for Selected Mycotoxins: Ochratoxins, and Trichothecenes, Ergot. In: World Health Organization. Geneva.

How to Cite

Ezquerra-Brauer, J.-M., Pérez-Acosta, J.-A., Burgos-Hernández, A., Márquez-Ríos, E., & Arvizu-Flores, A.-A. (2011). Micotoxinas y Fosfatasa Alcalina de Camarón Cultivado. Avances En Nutrición Acuicola. Retrieved from https://nutricionacuicola.uanl.mx/index.php/acu/article/view/86

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